PCR儀操作使用說明：

（一）試劑PCR儀

1.引物：決定擴增的特異性。根據檢測的DNA不同，選用不同引物，每種病原微生物都有自己特異的引物。

2.耐熱的DNA聚合酶：此酶是從耐熱細菌中分離出來的，能耐受高溫90℃-100℃。

3.10×PCR緩沖液：500mmol/l KCl;100mmol/L Tris-HCl（pH8.4,20℃）150mmol/L MgCl2,1mg/ml明膠。10×PCR緩沖液隨酶一起購買。

4.5mmol/L dNTP貯備液：將dATP、dCTP、dGTP和dTTP鈉鹽各100mg合并，加入滅菌去離子水溶解，用NaOH調pH至中性，分裝每份300μl，-20℃保存。dNTP濃度用UV吸收法測定。現用dNTP溶液均有商品化產品。

5.DNA模板：用處理液將待測標本處理，不同處理方法、操作各異，但目的是暴露標本中被檢測的DNA。

（二）操作程序PCR儀

過去標準的PCR操作程序是將PCR儀必需反應成份分別加入一微量離心管中，然后置于一定的循環參數條件下進行循環擴增。具體如下：

1.向一微量離心管中依次加入

DNA模板             102-105拷貝

引物                各1μmol/L

dNTP                各200μmol/L

10×PCR緩沖液       1/10體積

ddH2O               補到終體積（終體積50μl-100μl）

混勻后，離心15s使反應成分集于管底。以上步驟僅在實驗研究用，現在商品化試劑已將dNTP、10×PCR緩沖液，引物，ddH2O混合在一起，反應體積為20-25μl，只要試驗人員加入處理好的樣品就可以了。

2.加石蠟油50-100μl于反應液表面以防蒸發。置反應管于97℃變性10min。

3.冷至延伸溫度時，加入1-5u Taq DNA聚合酶，離心30s使酶和反應液充分混合。現在臨床使用試劑酶通常已加入反應液中。

4.PCR儀的循環程序為：94℃變性30s，55℃退火20s，然后在72℃延伸30s，共循環30-35次。較為后一次循環結束后，再將反應管置72℃溫育5min，以確保充分延伸。

PCR儀尚可用于組織標本DNA的擴增。由于固定組織標本的DNA常發生降解，就給常用的分析方法如Southern轉印雜交等帶來一定困難。

在應用PCR方法檢測RNA病毒時，首先應將RNA轉化成cDNA才能進行擴增，因為PCR只能對DNA模板進行擴增，我們把這種RNA的PCR反應稱為反轉錄PCR，簡稱RT-PCR。把由RNA轉化成DNA的過程叫做反轉錄，反轉錄需要在反轉錄酶的作用下完成。

PCR儀使用注意事項：

1. PCR基因擴增儀應放置在水平堅固的平臺上，外界電源系統電壓要匹配，并要求有良好的接地線。

2.環境溫度保持在23℃左右，濕度保持在60％左右。

3.應配備功率≥3000W的穩壓器。

4.應定期清潔維護。

5.使用時應嚴格遵守上述使用步驟。

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